Das umständliche Suchen nach Pleurozystiden im Quetschpräparat machte mir schon sehr früh in meinen Mikroskopieranfängen wenig Spaß und so suchte und fand ich eine Möglichkeit, wie es auch anders und schneller ging.
Ich legte mir zuerst ein mal kleinere Pilzchen z.B. Coprinus miser oder C. leiocephalus, komplett oder Teile davon mit der Hutoberfläche auf den Objektträger. Nun konnte ich an den nach oben stehenden Lamellen mit dem Zehner-Objektiv die Tiefenschärfe herauf- und herunter- fahren und dabei sehr gut die deutlich abstehenden bzw. herausragenden Pleurozystiden erkennen. Dies ging aber nur mit Frk., deren Lamellenbreite ein bestimmtes Maß nicht überschritten, da sonst das Objektiv auf den Frk. aufsetzte.
Junge Frk., deren Lamellen noch sehr dicht zusammen standen, habe ich dann halbiert oder geviertelt und am Stielansatz ca. 1/4 des Hutes gekappt. In den meisten Fällen vergrößerte sich nun der Abstand der Lamellen, so daß man zwischen diesen wie  oben verfahren konnte.
Bei Frk. mit breiteren Lamellen ging dies so nicht mehr und ich machte es dann folgendermaßen:
Mit einer Rasierklinge schnitt ich 2-4 Lamellen in zusammenhängender Formation aus dem Frk. heraus. 
Danach legte ich diese flach mit einer Lamellenfläche auf den Objektträger etc. und schnitt mir von oben her kurze, ca 1 mm breite Stücke ab, die wieder in Hochkantposition gebracht, nun genau so beobachtet werden konnten wie gehabt.
Dieses Verfahren stellte sich als sehr nützlich und positiv heraus, weil man so mit einem Blick Pleurozystiden feststellen konnte, die andere manchmal erst in zeitraubender Kleinarbeit oder gar nicht finden konnten. Da aber wohl kein System vollkommen ist, so hat auch dieses seine Nachteile.
Hans Bender